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黑曲霉alpha;- 葡萄糖苷酶Asn694突变对水解和转糖基化的影响
Min Ma 1& Masayuki Okuyama 1&Megumi Sato 1&Takayoshi Tagami 1&Patcharapa Klahan 1&Yuya Kumagai 1&Haruhide Mori 1&Atsuo Kimura 1
收到:2017年3月8日/修订:2017年6月20日/接受:2017年6月21日/在线发布:2017年7月7日
# 德国Springer-Verlag GmbH 2017
摘要黑曲霉alpha;- 葡萄糖苷酶(ANG)是糖苷水解酶家族31的成员,在非还原端催化alpha;- 葡萄糖苷键的水解。在高浓度麦芽糖的存在下,该酶还催化通过反式葡萄糖基化作用形成alpha;- (1 → 6)- 葡萄糖基产物,并被用于生产工业上有用的乳糖和异麦芽低聚糖。在100mM存在下的初始transglucosylation由野生型ANG麦芽糖[GLC(alpha; 1 - 4)GLC]产生两个alpha; - (1 → 6) -和alpha; - (1 →4)-糖苷键,后者占转移反应产物总量的〜25%。的麦芽三糖[GLC(alpha; 1 - 4)GLC(alpha; 1 - 4)GLC],alpha; - (1 → 4)-glucosyl productdisappearsquickly,whereasthe alpha; - (1 → 6)-glucosylproducts潘糖[GLC(alpha; 1 - 6) GLC(alpha; 1 - 4)GLC],异麦芽糖[GLC(alpha; 1 - 6)GLC]和异麦芽三糖[GLC(alpha; 1 - 6)GLC(alpha; 1 -6)Glc]累积。为了修饰ANG的转糖基化特性,用Ala,Leu,Phe和Trp代替了Asn694残基,该残基被预测与ANG的正向亚位点形成有关。除N694A外,这些突变增强了alpha;- (1 → 4)转移反应产生麦芽三糖的初始速度,然后以与野生型ANG相似的速率降解。随着反应时间的增加,N694F和N694W突变导致大量异麦芽糖和
电子补充材料本文的在线版本(doi :10.1007 / s00253-017-8402-6)包含补充材料,授权用户可以使用。
okuyama@abs.agr.hokudai.ac.jp
kimura@abs.agr.hokudai.ac.jp 1个 北海道大学农业研究部,日本札幌060-8589 |
异麦芽三糖比用野生型酶获得的要好。在反应的最后阶段,主要产物是蔗糖(N694A和N694L)或异麦芽糖(N694F和N694W)。
关键词alpha;- 葡萄糖苷酶。转糖基化。低聚异麦芽糖。黑曲霉。结构要素。定点诱变
介绍
益生元是有益细菌(包括双歧杆菌属和乳杆菌属)选择性使用的低聚糖,并且已显示,日常饮食中摄入益生元可以改善人体健康。这些化合物转化为短链脂肪酸(例如乙酸盐,丙酸盐和丁酸盐)可改善食物摄入,降低发炎活性并促进胰岛素信号传导(Hur和Lee,2015年)。益生元的主要类别是低聚果糖和低聚半乳糖。其他有益的益生元碳水化合物包括异麦芽低聚糖(IMOs),木寡糖,大豆寡糖,乳糖蔗糖和甘露寡糖(Kothari和Patel 2014 )。
间海事组织,潘糖的益生元效果(PN; alpha; d -glucopyranosyl-(1 → 6) - alpha; - d -glucopyranosyl-(1 → 4) - d 吡喃葡萄糖),和其他寡糖含有alpha; - (1 → 6) -糖苷键(一个或多个)是在双歧杆菌肠道菌群(Kohmoto等数量的增加1988 ,1991 ),特别是在响应于IMO的二糖和三糖的级分(Kaneko等人。1994年)。在试验培养和结肠发酵模拟中,PN还促进双歧杆菌的显着生长(Mauml;kelauml;inen等,2009)。; Kohmoto等。1992 )。在使用黑曲霉(ANG)的alpha;- 葡萄糖苷酶的反应中,通过alpha;- 葡萄糖苷酶催化的麦芽糖(G2)(Takaku 1988 )实现了含alpha;- (1 → 6)-葡萄糖苷键糖的工业生产。它属于糖苷水解酶家族31(GH31)。ANG催化形成alpha;- (1 → 6)-糖苷键的能力引起对该酶的极大兴趣。
alpha;- 葡萄糖苷酶水解alpha;-在底物非还原端的糖苷键。在高底物浓度的存在下,该酶还催化转糖基化,其将葡糖基部分从供体底物转移至受体底物的OH-基团。该酶采用的双置换机制通过糖基酶中间体进行,该中间体涉及两个功能基团:催化亲核试剂和一般的酸/碱催化剂。后者将质子转移至糖苷键,随后离去基团离开底物。同时,亲核试剂攻击异头碳形成中间体。水解是由于中间体在涉及水分子的反应中分解(去糖基化)而导致的,并由一般的碱催化剂辅助活化。转葡糖基化通过相同的去糖基化步骤进行,但糖(醇)分子的OH-基团取代了水分子。在高浓度的G2下,alpha; 葡萄糖苷酶最初合成PN(图1 a)和麦芽三糖(G3)(图1 用b)alpha; - (1 → 6)和alpha; - (1 → 4)传输,分别。随着从伴随水解而得,并且在糖基化步骤释放的葡萄糖的量,所述酶异麦芽糖产生(IG2)(图1 c)和IG2可以作为进一步的受体物种充当为异麦芽三糖(IG3)生产(图1 d )。偶尔发生转移至2-OH或3-OH部分[分别形成曲二糖(KJ)或黑糖(NR)]。
该反应的机理表明,转葡萄糖基化所需的结构元件存在于亚位点 1和/或 2处(图1 )。由于没有可用的ANG的三维结构,我们基于同源GH31蛋白的结构,预测Asn694是正子位点的候选残基。
在这项研究中,我们构建了四个突变酶N694A / L / F / W,其水解活性表明Asn694对正亚位点的贡献。我们分析了由高浓度的G2与野生型ANG和四个Asn694变体反应产生的转糖基化产物。结果表明,在反应的初始阶段,野生型酶催化了alpha;- (1 → 4)-和alpha;- (1 → 6)糖苷键的形成。N694L / F / W改变了转糖基化的特异性,暗示Asn694是调节ANG的转糖基化产物的结构元件。
材料和方法
生产Asn694突变的ANG
-1 1 2 -1 1 2 |
Asn694的定点诱变是根据PrimeSTAR诱变基础试剂盒(Takara Bio,Shiga,Japan)的手册进行的,使用模板[带有成熟ANG cDNA 的表达载体(Tagami等人2013a )]和引物(表1))。使用ABI PRISM 310遗传分析仪(Thermo-Applied Biosystems,卡尔斯巴德,加利福尼亚州,美国)分析所得产物的核苷酸序列。如先前所述(Tagami等人2013a )进行突变ANG的生产和纯化。酶的纯度通过SDS-PAGE确定。分离的蛋白质的浓度通过氨基估计
图1.黑曲霉alpha;- 葡糖苷酶(ANG)催化的转葡糖基化反应,形成了聚蔗糖(PN),beta;-麦芽三糖(G3),c-异麦芽糖(IG2)和d-异麦芽三糖(IG3)。圈,葡萄糖单位;带有斜线的圆圈,还原葡萄糖单位;两个圆之间的横线,alpha;- (1 → 4)-糖苷键;两个圆之间的楔形(^),alpha;- (1 → 6)糖苷键。的- 1, 1和 2子网站被表示为- 1, 1和 2,分别。– d中的左图描绘了葡萄糖基酶中间体
表1 本研究中用于PCR的寡核苷酸序列
方向 |
顺序(5 → 3 ) |
|
N694A_s |
感 |
GGGTTT GCT GGAAACTCCGATGAGGAG |
N694A_a |
反义 |
GTTTCC AGC AAACCCACAGGTGTCCGC |
N694L_s |
感 |
GGGTTT TTA GGAAACTCCGATGAGGAG |
N694L_a |
反义 |
GTTTCC TAA AAACCCACAGGTGTCCGC |
N694F_s |
感 |
GGGTTT TTT GGAAACTCCGATGAGGAG |
N694F_a |
反义 |
GTTTCC AAA AAACCCACAGGTGTCCGC |
N694W_s |
感 |
GGGTTT TGG GGAAACTCCGATGAGGAG |
N694W_a |
反义 |
GTTTCC CCA AAACCCACAGGTGTCCGC |
下划线的突变密码子
使用JLC-500 / V系统(日本东京的Nihon Denshi)对蛋白质水解产物(6 M HCl,110°C,24 h)进行酸分析,然后使用茚三酮检测系统进行分析。
使用由0.2%(w / v)G2(Nihon Shokuhin Kako,Tokyo,Japan),40 mM乙酸钠缓冲液(pH 4.0),0.02%Triton X组成的标准反应混合物,在37°C下测量酶活性9分钟-100,和适当浓度的酶。将反应wasterminated bythe additionof 100 mu; 大号的2M的Tris-HCl(pH 7.0)中。使用葡萄糖C-II测试(和光纯药工业株式会社,日本大阪)对释放的葡萄糖进行定量。将一单位活性定义为在上述条件下每分钟水解1mu;molG2 的酶的量。
pH和温度对活性的影响
在标准反应条件下评估了Asn694突变体活性的最佳pH,除了Britton-Robinson缓冲液(40 mM乙酸,40 mM磷酸和40 mM硼酸;用NaOH调节的pH; pH 2.3 – 8.3)用乙酸盐缓冲液代替。酶的使用浓度如下:N694A为0.80 nM,N694L为0.51 nM,N694F为0.64 nM,N694W为0.40 nM。
为了研究pH的稳定性,将N694A(79 nM),N694L(51 nM),N694F(64 nM)或N694W(40 nM)在10倍稀释的Britton-Robinson缓冲液(pH 3.0 – 11.5)含有0.1%Triton X-100。使用McIlvaine缓冲液(0.2 M NaHPO 4,并通过添加0.1 M柠檬酸调节pH值)评估了N694L和N694W在pH 2.3 – 3.2下的活性。在标准测定条件下测量残留活性。稳定区域定义为显示残留活性gt;原始活性90%的pH范围。
N694A(4.0 nM),N694L(2.6 nM),N694F(3.2 nM)和N694W(2.0 nM)的热稳定性分别通过将酶在含有0.1%Triton X-的20 mM乙酸钠缓冲液(pH 4.0)中孵育来确定。 100在37 – 70°C下进行15分钟,然后在标准测定条件下测量残留活性。如上所述确定稳定区域。
水解和转糖基化的表征
用于测量水解速率的底物是G2,G3,麦芽四糖(G4),麦芽五糖(G5),麦芽六糖(G6),麦芽七糖(G7),KJ,NR(Wako Pure Chemical Industry),IG2和PN(Tokyo Chemical)工业,日本东京)。动力学参数k cat 和K m是在KaleidaGraph 3.6 J(Synergy Software,雷丁,宾夕法尼亚州,美国)中从Michaelis-Menten方程的权重对八种底物浓度(从三分之一到三倍)下的初始速度的加权拟合计算得出的K m值。重复实验三次,计算平均值和标准偏差值。根据k cat和K m的平均值计算K cat / K m 值。酶的浓度如下:野生型ANG(1.3 – 2.9 nM),N694A(0.35 – 4.0 nM),N694L(0.73 – 5.1 nM),N694F(0.43 – 3.2 nM)和N694W(0.27 – 8.1 nM) )。
野生型或突变的ANG 的初始转葡萄糖基化速度(v tg)以G2为底物进行了分析。将由100 mM G2,酶(野生型,4.2 nM; N694A,3.2 nM; N694L,1.7 nM; N694F,2.6 nM; N694W,2.0 nM)和40 mM乙酸钠缓冲液(pH 4.0)组成的反应混合物在90°C下温育。 37℃。2、4、8、12和15分钟后,通过在100°C下加热3分钟来终止反应。葡萄糖,G2,G3,PN和葡萄糖的浓度[CT; 2,4-二-O-(alpha;-葡萄糖基]-葡萄糖]使用C
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